线粒体——细胞的“能量中枢”与“命运开关”
在微观的细胞世界中,线粒体不仅是制造能量的“发电厂”(95%的ATP由此产生),更是调控生死决策的“指挥中心”。当线粒体功能健全时,它们通过膜电位(ΔΨm) 驱动ATP合成、钙稳态与信号传导;一旦功能崩溃(如凋亡、疾病中),则会触发活性氧(ROS)爆发与线粒体网络解体——这些变化如同细胞命运的“早期警报”。
为什么需要精准检测线粒体?
1. 功能监控(ΔΨm):
• 膜电位是线粒体健康的“电压表”,其崩溃(如JC-1红绿比↓或TMRE荧光↓)是凋亡/坏死的最早标志。
2. 结构评估(质量):
• MitoTracker Green FM标记总线粒体池,揭示线粒体数量增减与形态异变(肿胀/碎片化),是“细胞器人口普查”的金标准。
3. 危机预警(ROS):
• DCFH-DA捕捉整体氧化风暴,MitoSOX Red精准定位线粒体超氧阴离子,为氧化损伤提供“分子雷达”。
一、线粒体膜电位检测
线粒体膜电位(ΔΨm)是维持线粒体功能(如ATP合成、钙离子缓冲、活性氧产生和凋亡信号传导)的关键驱动力。检测其变化对于研究细胞能量代谢、细胞凋亡、神经退行性疾病、心血管疾病、癌症等至关重
JC-1染料
核心原理:浓度依赖的荧光转换
• JC-1 是一种独特的“双发射”亲脂性阳离子染料。• 低 ΔΨm(或低染料浓度)时: JC-1 主要以单体形式存在于细胞质中,发出绿色荧光(最大激发/发射波长约 510 nm / 527 nm)。• 高 ΔΨm 时: 由于线粒体基质带负电,带正电的JC-1 被大量摄取并在线粒体基质内积累。当浓度足够高时,JC-1 分子会聚集成 J-聚集体 (J-aggregates)。J-聚集体发出红色荧光(最大激发/发射波长约 585 nm / 590 nm)。• 关键指标: 检测的是 红色荧光(聚集体)与绿色荧光(单体)的强度比值 (Red/Green Ratio)。这个比值与ΔΨm 高度正相关:比值越高,ΔΨm 越高;比值越低,ΔΨm 越低。
主要优点:
1. 比值法抗干扰性强: 这是JC-1最大的优势。比值测量能有效抵消因细胞大小、形状、染料装载效率、探针浓度、仪器设置(如激光功率、PMT电压)差异以及光程差异(在显微镜下)等因素引起的误差。结果更可靠,定量性更好。2. 可视化清晰: 在荧光显微镜下,高ΔΨm的细胞/线粒体呈现明亮的红色(聚集体)和较弱的绿色(单体);低ΔΨm时则呈现明亮的绿色(单体)和微弱的红色(或无红色)。这种颜色变化非常直观,易于识别细胞群体内或单个细胞内的异质性(如凋亡细胞vs健康细胞)。3. 广泛用于凋亡研究: ΔΨm崩溃是细胞凋亡早期的关键事件,JC-1比值下降是检测凋亡启动的经典标志。
主要缺点:
1. 优化要求高: 探针浓度、孵育时间、温度必须针对每种细胞类型严格优化。浓度过低无法形成足够聚集体,浓度过高可能导致单体荧光饱和或非特异性染色。2. 聚集体形成动力学: J-聚集体的形成并非瞬间完成,且在某些细胞类型或条件下(如线粒体膜成分改变)可能不完全,影响比值准确性。3. 光稳定性相对较差: 相较于TMRE,JC-1(尤其是红色聚集体)更容易发生光漂白,在长时间活细胞成像或需要高激光强度的共聚焦成像中受限。4. 光谱串扰: 需要仔细设置滤光片,确保绿色和红色通道之间有良好的分离,避免串色(Bleed-through)。5. 潜在毒性: 较高浓度或长时间孵育可能对某些细胞有毒性。
典型应用:
• 流式细胞术高通量检测细胞群体ΔΨm变化(如药物筛选、毒性测试)。• 荧光显微镜(尤其是宽场)观察ΔΨm在细胞群体或单个细胞内的分布和异质性。• 细胞凋亡的早期检测(核心应用)。• 评估线粒体功能状态。
TMRE染料
核心原理:电位依赖的荧光积累
• TMRE 是一种单发射的亲脂性阳离子染料(属于罗丹明家族)。• 其荧光强度(橙红色,最大激发/发射波长约 550nm / 576 nm)直接与线粒体摄取积累的染料量成正比。• 由于染料积累量由线粒体内膜两侧的电位差(ΔΨm)驱动(遵循能斯特方程),因此荧光强度(平均荧光强度 - MFI)与 ΔΨm 正相关:荧光越强,ΔΨm 越高;荧光越弱,ΔΨm 越低。
主要优点:
1. 优异的光稳定性: TMRE 的光稳定性非常好,特别适合长时间的活细胞动态成像,尤其是在共聚焦显微镜或高内涵成像系统上进行时间序列拍摄(Time-lapse)。2. 低细胞毒性: 在推荐的工作浓度下,TMRE 对细胞的毒性通常很低,对细胞生理状态干扰小,是活细胞成像的首选之一。3. 泄漏速率较慢:TMRE 从线粒体中泄漏的速度较慢,能更好地维持稳态荧光信号,利于动力学观察。4. 使用相对简单: 原理直观,操作流程相对标准化。5. 适合高分辨率成像: 与共聚焦、双光子显微镜兼容性好,能提供清晰的线粒体亚细胞定位图像。
主要缺点:
1. 依赖绝对荧光强度: 这是单色探针的主要局限。荧光强度受多种因素影响:
• 染料浓度: 必须精确控制并保持一致。• 装载效率: 受细胞类型、活力、孵育条件影响。• 细胞大小/形态/线粒体数量: 大细胞或线粒体丰富的细胞本底荧光更高。• 仪器设置: 激光功率、PMT增益、曝光时间等直接影响读数。• 光程/聚焦: 显微镜下不同焦平面或细胞厚度影响光强度。
2. 严格的对照需求: 为了准确解释结果,必须设置有效的阳性和阴性对照:
• 阴性对照 (ΔΨm 完全崩溃): 通常在实验结束时加入线粒体解偶联剂(如 CCCP 或 FCCP,常用浓度 10-50 μM,孵育 5-30 分钟),使所有细胞的荧光降至最低基线水平(代表背景/非电位依赖的染色)。实验中细胞的MFI需要与这个对照值比较。• 阳性对照/未处理组: 健康细胞作为高ΔΨm的基准。
3. 无法直观显示异质性
• 不像JC-1有颜色变化,TMRE的单色信号在显微镜下不易直接目视区分ΔΨm高低(除非结合图像分析软件测量强度)。
典型应用:
• 活细胞实时成像(核心优势): 共聚焦/双光子显微镜下监测单个细胞或细胞群ΔΨm的动态变化过程(如药物处理、代谢刺激、钙信号等引起的快速或慢速波动)。• 流式细胞术检测ΔΨm(需结合CCCP对照进行数据归一化)。• 研究电兴奋性细胞(如神经元、心肌细胞)的线粒体功能,其对微环境变化敏感。• 需要长时间观察的实验。
二、线粒体质量检测
MitoTracker Green FM:线粒体特异性结构标记探针
MitoTracker Green FM(MTG) 是一种高性能荧光染料,专为精准标记细胞内的总线粒体池而设计。其核心价值在于提供不依赖线粒体功能状态的结构性成像,成为研究线粒体质量(Mass)的首选化学工具。
高选择性与膜电位非依赖性
线粒体高度特异性:
• 通过优化亲脂性结构,MTG选择性蓄积于线粒体基质,与胞内其他细胞器(如溶酶体、内质网)无交叉染色,信噪比显著优于普通染料。• 标记全部线粒体:
染色不依赖线粒体膜电位(ΔΨm),可同时标记健康(高ΔΨm)与功能障碍(低ΔΨm/肿胀/碎片化)的线粒体,真实反映总线粒体的数量与形态分布。
卓越荧光特性
特性 科学优势
明亮绿色荧光 激发/发射峰≈490/523 nm,兼容
高光稳定性 抗光漂白能力优异,支持长时间活细胞动态成像(如线粒体融合/分裂追踪)
超低背景 仅在疏水性线粒体脂质环境发光
三、ROS检测
DCFH-DA:广谱ROS探针(以H₂O₂为主)
检测原理
1. 穿透与活化:
• 脂溶性DCFH-DA被动扩散进入细胞,被胞内酯酶(Esterase)水解为极性分子 DCFH(2',7'-二氯二氢荧光素),无法穿出细胞膜。
2. 氧化与发光:
• DCFH被ROS(主要是H₂O₂,也可被•OH/ONOO⁻氧化) 氧化生成 DCF(2',7'-二氯荧光素)。• 发射绿色荧光(最大激发/发射波长:Ex ≈ 488 nm, Em ≈ 525 nm),强度与ROS水平正相关。
适用场景
• 细胞整体ROS水平初筛(如药物/环境毒素诱导的氧化应激)。• 流式细胞术高通量检测(如免疫细胞呼吸爆发)。• 与线粒体/溶酶体探针联用(需避免光谱重叠)。
优点 vs 缺点
优点 缺点
操作简单,成本低廉 特异性低
兼容常规流式/FITC滤光片 光漂白强
可半定量比较不同处理组 自发氧化
pH敏感性 荧光强度受胞内pH影响
MitoSOX™ Red:线粒体超氧阴离子(O₂•⁻)特异性探针
检测原理
1. 靶向蓄积:
• 修饰的二氢乙锭(DHE)衍生物,带亲脂性三苯基膦阳离子(TPP⁺),通过线粒体膜电位(ΔΨm)定向富集到线粒体基质。
2. 特异性氧化:
• 被线粒体内的 超氧阴离子(O₂•⁻) 氧化生成 2-羟基乙锭,与DNA结合后发射红色荧光(最大激发/发射波长:Ex ≈ 510 nm, Em ≈ 580 nm)。
适用场景
• 线粒体特异性O₂•⁻检测(如凋亡、缺血再灌注损伤、神经退行性疾病)。• 活细胞共聚焦动态成像(观察线粒体ROS时空变化)。• 评估线粒体靶向抗氧化剂效果(如MitoQ、SkQ1)。
优点 vs 缺点
优点 缺点
精准定位线粒体 价格昂贵(约为DCFH-DA的10倍)
对O₂•⁻特异性高 (强于DHE)
光稳定性优于DCFH-DA 部分细胞类型可能滞留胞质(需优化浓度)
兼容TRITC/PE滤光片 高浓度可能抑制线粒体呼吸链
四、文献应用实例
实例1:流式细胞术分析线粒体膜电位,质量以及ROS水平
文章段落呈现
1.重悬与染色
将细胞沉淀重悬于 100 μl 1× 结合缓冲液(BD Bioscience 产品)中,加入以下荧光染料及抗体使得工作浓度达到相应要求:
• 线粒体标记:Mitotracker Green-FM(100 nM,绿色荧光,标记线粒体);• 活性氧(ROS)检测:H₂DCFDA(1 μM,进入细胞后被 ROS 氧化发出绿色荧光);• 线粒体膜电位(MMP)检测:TMRE(100 nM,红色荧光,依赖膜电位积聚于线粒体);• 细胞表面标志物抗体:• CD45-FITC(绿色荧光,标记白细胞共同抗原);• CD11b-PE(橙色荧光,标记单核细胞 / 巨噬细胞 / 小胶质细胞);• GLAST-APC(红色荧光,标记星形胶质细胞),均按 1:100 稀释。• 孵育条件:避光孵育 15 分钟,随后加入 200 μl 1× PBS 稀释。
2.流式细胞术分析
• 检测参数:每样本采集 10,000 个事件,通过流式细胞仪分析各荧光通道的信号强度,分别量化线粒体质量(Mitotracker Green)、ROS 水平(H₂DCFDA)、MMP(TMRE)及细胞分型(CD45/CD11b/GLAST)。
参考文献[1]:Navarro E, Gonzalez-Lafuente L, Pérez-Liébana I, et al. Heme-Oxygenase I and PCG-1α Regulate Mitochondrial Biogenesis via Microglial Activation of Alpha7 Nicotinic Acetylcholine Receptors Using PNU282987. Antioxid Redox Signal. 2017;27(2):93-105. doi:10.1089/ars.2016.6698
实例2:流式细胞数分析线粒体膜电位(MMP)与线粒体质量
文章段落呈现
1. 试剂与细胞准备
• 细胞株:K562G、K562R 细胞。• 染色试剂:• JC-1 试剂(2 μM,货号 #HY-15534,品牌#MedChemExpress),用于检测线粒体膜电位。• MitoTracker Green(0.1 μM,货号 #HY-135056,品牌#MedChemExpress),用于标记线粒体质量。
2. 染色操作流程
• 分组染色:• MMP 检测:取细胞悬液,加入 JC-1 试剂(终浓度 2 μM),37℃避光孵育 30 分钟。• 线粒体质量检测:另取细胞悬液,加入 MitoTracker Green(终浓度 0.1 μM),37℃避光孵育 30 分钟。• 洗涤与重悬:孵育结束后,用 PBS 洗涤细胞 2 次,1000 rpm 离心 5 分钟,弃上清,重悬于 500 μL PBS 中。
3. 流式细胞术分析
• 仪器参数:使用流式细胞仪(如 BD LSR II),设置 488 nm 激光激发:• JC-1 检测:收集 530 nm(绿色,单体)和 590 nm(红色,聚集体)荧光信号,计算红绿荧光比值。• MitoTracker Green 检测:收集 516 nm 绿色荧光信号,量化线粒体质量。
参考文献[2]:Feng L, Ding R, Qu X, et al. BCR-ABL triggers
a glucose-dependent survival program during leukemogenesis through the
suppression of TXNIP.Cell Death Dis. 2023;14(4):287. Published 2023 Apr 24. doi:10.1038/s41419-023-05811-2
实例3:流式细胞术分析线粒体活性氧(ROS)和膜电位
文章段落呈现
Figure 3A-B:线粒体 ROS 检测(MitoSOX 染色)
实验设计与目的
• 检测指标:线粒体超氧化物(ROS)水平,验证 ACLY 抑制剂诱导的氧化应激。• 处理条件:35μM或70 μM ACLY 抑制剂处理 THP-1 细胞 3,6,9,12 小时。
试剂准备:
• MitoSOX™ Red(品牌:Thermo Fisher Scientific,货号:M36008)用无血清培养基稀释至 5 μM 终浓度。
细胞处理:
1. 收集处理 3,6,9,12 小时的细胞,1500 rpm 离心 5 分钟,PBS 洗涤 1 次。2. 重悬于无血清培养基,加入 5 μM MitoSOX™ Red,37℃避光孵育 10 分钟。3. 预冷 PBS 洗涤 2 次,重悬于 1% FBS-PBS,立即上样流式细胞仪。
检测参数:
• 流式细胞仪:BD LSR II,488 nm 激光激发,PE检测通道(580 nm 发射光检测红色荧光)。• 数据分析:FlowJo v10.9.0,计算高 ROS 细胞群(MitoSOX 高荧光)的比例。
3. 关键结果
• 70 μM ACLY 抑制剂处理后,高 ROS 细胞比例从 0 小时的约 10% 升至 12 小时的 40%,证实 ROS 显著积累。
Figure 3C-D:线粒体膜电位(MMP)检测(TMRE 染色)
实验设计与目的
• 检测指标:线粒体膜电位(ΔΨm),验证 ACLY 抑制剂诱导的 MMP 损伤。• 处理条件:70 μM ACLY 抑制剂处理 THP-1 细胞 6 小时。
试剂准备:
• TMRE(品牌:MedChemExpress, 货号:HY-D0985A)用无血清培养基稀释至 100 nM 终浓度。
细胞处理:
1. 收集处理 6 小时的细胞,1500 rpm 离心 5 分钟,PBS 洗涤 1 次。2. 重悬于无血清培养基,加入 100 nM TMRE,37℃避光孵育 15 分钟。3. 预冷 PBS 洗涤 2 次,重悬于含 1% FBS-PBS,立即检测。
检测参数:
• 流式细胞仪:BD LSR II,488 nm 激光激发,PE检测通道(575 nm发射光检测红色荧光)。• 数据分析:FlowJo v10.9.0,计算低 MMP 细胞群(TMRE 低荧光)的比例。
关键结果
• 70 μM ACLY 抑制剂处理 6 小时后,低 MMP 细胞比例从 0 小时的约 5% 升至 30%,表明 MMP 显著降低。
参考文献[3]:Watanabe A, Tipgomut C, Totani H, et al. Noncanonical TCA cycle fosters canonical TCA cycle and mitochondrial integrity in acute myeloid leukemia. Cancer Sci. 2025;116(1):152-163. doi:10.1111/cas.16347
实例4流式细胞术分析线粒体ROS,膜电位,质量
文章段落呈现
线粒体膜电位(ΔΨm)检测
方法:
• 染料:使用 TMRE(Tetramethylrhodamine ethyl ester)(货号 HY-D0985A,品牌 MedChemExpress)。
步骤:
1. 将细胞(2 × 10⁵)接种于12孔板,顺铂处理24小时。 2. 加入100 nM TMRE染色液,避光孵育30分钟。 3. PBS洗涤2次。 4. 使用流式细胞仪(BD Accuri™ C6)或共聚焦显微镜(Zeiss LSM800)检测荧光强度。
结果展示:
线粒体ROS检测
方法:
• 染料:MitoSOX™ Red Mitochondrial Superoxide Indicator(货号 M36008,品牌 Thermo Fisher Scientific)。
步骤:
1. 顺铂处理细胞24小时。2. 收集细胞,用HBSS缓冲液洗涤。3. 加入5 μM MitoSOX染料,37°C避光孵育10分钟。4. HBSS洗涤2次。5. 流式细胞仪(BD Accuri™ C6)检测红色荧光(激发/发射波长:510/580 nm)。
结果展示
• ROS水平以相对荧光强度表示(*P < 0.05)。
线粒体质量检测
方法:
• 染料:MitoTracker Green FM(货号 M7514,品牌 Invitrogen))。
步骤:
1. 细胞用PBS重悬。2. 加入100 nM MitoTracker Green,37°C避光孵育30分钟。3. PBS洗涤2次。4. 流式细胞仪检测绿色荧光(激发/发射波长:490/516 nm)。
结果展示:
参考文献[4]:Zheng ZY, Yang PL, Li RY, et al. STAT3β disrupted mitochondrial electron transport chain enhances chemosensitivity by inducing pyroptosis in esophageal squamous cell carcinoma. Cancer Lett. 2021;522:171-183. doi:10.1016/j.canlet.2021.09.035
主营项目
1. 动物实验
动物饲养、疾病造模、行为学检测、心功能、无创血压、血常规、全自动生化检测等
2. 细胞实验
CCK8/MTT、原代细胞分离、流式细胞实验、细胞划痕、侵袭、迁移、EDU染色、转染、稳定株
3. 分子生物学
PCR检测、荧光定量PCR、绝对定量PCR、端粒酶长度、pull down、双荧光素酶、SSR、SNP检测等
4. 蛋白实验
WB、Co-IP、酵母双杂
5. 病理实验
HE染色、免疫组学、电镜
6. 生理生化实验
肝肾功能、抗氧化、免疫反应等生理免疫指标;动植物营养指标、微量元素、重金属、酶活等。
7. 多组学实验
基因组、转录调控、蛋白组、代谢组、微生物多样性、宏基因组、生信分析
8. 整体课题实验
方案设计、整体实验交付、标书写作、论文润色、协助投稿
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